間充質(zhì)細(xì)胞（MesenchymalStemCells，簡稱MSC）是一類具有多向分化潛能的干細(xì)胞，廣泛存在于多種組織中，如骨髓、脂肪、臍帶、牙髓等。由于其分化潛能強(qiáng)、免疫調(diào)節(jié)功能顯著，間充質(zhì)干細(xì)胞在組織工程、再生醫(yī)學(xué)、免疫治療等領(lǐng)域有著廣泛的應(yīng)用。
操作細(xì)則涉及間充質(zhì)細(xì)胞的分離、培養(yǎng)、鑒定、擴(kuò)增及儲(chǔ)存等環(huán)節(jié)。以下是操作過程中常見的步驟和注意事項(xiàng)。
一、間充質(zhì)細(xì)胞的分離
組織取樣
常見的組織來源包括骨髓、脂肪、臍帶、牙髓等。選擇適當(dāng)?shù)慕M織并進(jìn)行消毒，避免污染。
取樣時(shí)需注意無菌操作，避免外源性污染。
組織消化
使用酶（如膠原酶、胰蛋白酶）對(duì)組織進(jìn)行消化，分解組織基質(zhì)，使細(xì)胞能夠脫落。
消化過程通常控制在37°C下進(jìn)行，時(shí)間一般為30分鐘至1小時(shí)，具體根據(jù)組織類型和酶的種類來調(diào)整。
必須注意酶的濃度、消化時(shí)間以及溫度，避免細(xì)胞損傷。
細(xì)胞收集
消化完成后，加入培養(yǎng)基停止酶的活性，經(jīng)過離心收集細(xì)胞。
使用細(xì)胞篩（一般為70μm篩網(wǎng)）過濾，去除未完全消化的組織塊。
細(xì)胞洗滌
通過離心洗滌細(xì)胞3次，去除血液成分、死細(xì)胞及殘留的酶。
洗滌后用適當(dāng)?shù)呐囵B(yǎng)基重懸細(xì)胞，調(diào)節(jié)細(xì)胞濃度。
細(xì)胞培養(yǎng)
將細(xì)胞接種到培養(yǎng)瓶中，加入含有10%-20%胎牛血清（FBS）和其他生長因子的培養(yǎng)基，培養(yǎng)在37°C、5%CO?的恒溫培養(yǎng)箱中。
二、間充質(zhì)細(xì)胞的培養(yǎng)
培養(yǎng)基選擇
常用的培養(yǎng)基為DMEM（低葡萄糖）或α-MEM等，添加10%-20%FBS和1%青鏈霉素（抗生素）作為標(biāo)準(zhǔn)培養(yǎng)基。
為提高細(xì)胞生長，可能還需要添加一些特定的生長因子，如表皮生長因子（EGF）、基本成纖維生長因子（bFGF）等。
細(xì)胞培養(yǎng)條件
培養(yǎng)溫度：37°C。
CO?濃度：5%。
相對(duì)濕度：大約95%。
細(xì)胞傳代
間充質(zhì)細(xì)胞通常在80%-90%融合時(shí)進(jìn)行傳代。
傳代時(shí)，使用0.25%胰蛋白酶-EDTA消化細(xì)胞，避免長時(shí)間消化。
細(xì)胞處理后，離心收集并重懸，接種至新的培養(yǎng)瓶中，按照適當(dāng)?shù)募?xì)胞密度分配。
細(xì)胞密度與培養(yǎng)瓶
一般建議的接種密度為5000-10000個(gè)細(xì)胞/cm²。
傳代時(shí)，保持細(xì)胞在適當(dāng)?shù)慕臃N密度范圍內(nèi)，以免細(xì)胞因過度密集而相互抑制生長。
細(xì)胞狀態(tài)監(jiān)控
定期觀察細(xì)胞形態(tài)，健康的間充質(zhì)細(xì)胞通常呈現(xiàn)梭形或紡錘形。
細(xì)胞培養(yǎng)基需定期更換（一般為每2-3天），保持細(xì)胞生長的最佳環(huán)境。
三、間充質(zhì)細(xì)胞的鑒定
形態(tài)學(xué)鑒定
間充質(zhì)細(xì)胞在培養(yǎng)時(shí)呈梭形、長條狀，形成單層、較為均一的細(xì)胞層。
表面標(biāo)志物檢測(cè)
采用流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞表面標(biāo)志物，通過免疫熒光法或抗體染色法檢測(cè)MSC的特異性表面標(biāo)志物。
常見的標(biāo)志物：
陽性標(biāo)志物：CD73、CD90、CD105。
陰性標(biāo)志物：CD34、CD45、CD14。
分化潛能檢測(cè)
間充質(zhì)細(xì)胞具有分化成骨細(xì)胞、軟骨細(xì)胞和脂肪細(xì)胞的潛能，常通過誘導(dǎo)分化實(shí)驗(yàn)來檢測(cè)。
骨分化：通過ALP（堿性磷酸酶）、鈣鹽沉積染色（如茜素紅染色）檢測(cè)。
軟骨分化：通過突觸蛋白染色、甲硫氨酸染色等方法檢測(cè)。
脂肪分化：使用油紅O染色檢測(cè)脂肪小滴。
基因表達(dá)檢測(cè)
PCR、RT-PCR等方法檢測(cè)MSC相關(guān)基因的表達(dá)，如Osterix、Runx2、PPAR-γ等基因。
四、間充質(zhì)細(xì)胞的凍存與復(fù)蘇
凍存
細(xì)胞在傳代后需進(jìn)行凍存時(shí)，加入適量的凍存液（通常為10%-20%DMSO）和10%-20%FBS，混合后將細(xì)胞分裝入凍存管。
凍存時(shí)，先在-80°C的冰箱中緩慢降溫，12小時(shí)后轉(zhuǎn)入液氮罐儲(chǔ)存。
復(fù)蘇
取出凍存管，快速將細(xì)胞復(fù)蘇于37°C水浴中，盡量減少復(fù)蘇時(shí)間。
復(fù)蘇后，立即將細(xì)胞接種到含有培養(yǎng)基的培養(yǎng)瓶中，避免細(xì)胞受到高濃度DMSO的傷害。
細(xì)胞復(fù)蘇后需要密切觀察，若細(xì)胞恢復(fù)良好，則可以按常規(guī)方式進(jìn)行培養(yǎng)。
五、常見注意事項(xiàng)
無菌操作：所有操作應(yīng)在無菌條件下進(jìn)行，尤其是細(xì)胞分離、培養(yǎng)、傳代等過程，避免細(xì)菌、真菌等污染。
細(xì)胞密度控制：過高或過低的細(xì)胞密度都會(huì)影響細(xì)胞生長，因此在傳代時(shí)需要保持適宜的接種密度。
細(xì)胞監(jiān)測(cè)：定期檢查細(xì)胞生長狀況，及時(shí)更換培養(yǎng)基，并觀察細(xì)胞是否有污染或病變跡象。
凍存操作謹(jǐn)慎：凍存液濃度不當(dāng)或凍存操作不當(dāng)可能導(dǎo)致細(xì)胞死亡，因此操作時(shí)要小心，確保細(xì)胞存活率。
通過以上操作細(xì)則，可以確保間充質(zhì)細(xì)胞的高效分離、健康培養(yǎng)和可靠鑒定，為后續(xù)的研究和臨床應(yīng)用奠定基礎(chǔ)。
